• Artykuły
  • Forum
  • Ciekawostki
  • Encyklopedia
  • Limfocyty T regulatorowe



    Podstrony: [1] [2] [3] 4
    Przeczytaj także...
    Przeszczepienie serca (heart transplantation, HTX) to metoda leczenia schyłkowej niewydolności serca, polegająca na przeszczepieniu serca pozyskanego od martwego dawcy. Wykonywana jest jedynie w specjalistycznych ośrodkach.Jelito – fragment przewodu pokarmowego kręgowców, a u bezkręgowców – fragment lub cały przewód pokarmowy. W jelicie zachodzi proces wchłaniania substancji powstałych w wyniku enzymatycznego rozkładu pokarmów. Jego budowa jest zależna od stopnia skomplikowania ogólnego planu budowy ciała organizmu. U wyżej rozwiniętych zwierząt wyróżnia się jelito przednie, środkowe i tylne, a także jelito cienkie, grube, proste, czcze i ślepe.
    Przypisy[ | edytuj kod]
    1. A. Hänninen, L.C. Harrison. Gamma delta T cells as mediators of mucosal tolerance: the autoimmune diabetes model. „Immunol Rev”. 173, s. 109–119, luty 2000. PMID: 10719672. 
    2. H. Suzuki, Y.W. Zhou, M. Kato, T.W. Mak i inni. Normal regulatory alpha/beta T cells effectively eliminate abnormally activated T cells lacking the interleukin 2 receptor beta in vivo. „J Exp Med”. 190 (11), s. 1561–1572, grudzień 1999. PMID: 10587347. 
    3. M. Miyara, S. Sakaguchi. Human FoxP3(+)CD4(+) regulatory T cells: their knowns and unknowns. „Immunol Cell Biol”. 89 (3), s. 346–351, marzec 2011. DOI: 10.1038/icb.2010.137. PMID: 21301480. 
    4. L. Lu, H. Cantor. Generation and regulation of CD8(+) regulatory T cells. „Cell Mol Immunol”. 5 (6), s. 401–406, grudzień 2008. DOI: 10.1038/cmi.2008.50. PMID: 19118505. 
    5. K. Fischer, S. Voelkl, J. Heymann, G.K. Przybylski i inni. Isolation and characterization of human antigen-specific TCR alpha beta+ CD4(-)CD8- double-negative regulatory T cells. „Blood”. 105 (7), s. 2828–2835, kwiecień 2005. DOI: 10.1182/blood-2004-07-2583. PMID: 15572590. 
    6. S. Hori, T. Nomura, S. Sakaguchi. Control of regulatory T cell development by the transcription factor Foxp3. „Science”. 299 (5609), s. 1057–1061, luty 2003. DOI: 10.1126/science.1079490. PMID: 12522256. 
    7. Y. Nishizuka, T. Sakakura. Thymus and reproduction: sex-linked dysgenesia of the gonad after neonatal thymectomy in mice. „Science”. 166 (3906), s. 753–755, listopad 1969. PMID: 5823314. 
    8. R.K. Gershon, K. Kondo. Cell interactions in the induction of tolerance: the role of thymic lymphocytes. „Immunology”. 18 (5), s. 723–737, maj 1970. PMID: 4911896. 
    9. DB Murphy, LA Herzenberg, KO Okumura, LA Herzenberg, HO McDevitt. A new I subregion (I-J) marked by a locus (Ia-4) controlling surface determinants on suppressor T lymphocytes. „J Exp Med”. 144 (3), s. 699–712, 1976. 
    10. S. Schatten, J.A. Drebin, L.L. Perry, W. Chung i inni. Regulation of the immune response to tumor antigens. X. Activation of third-order suppressor T cells that abrogate anti-tumor immune responses. „J Immunol”. 133 (2), s. 1064–1069, sierpień 1984. PMID: 6234349. 
    11. B.R. Bloom, P. Salgame, B. Diamond. Revisiting and revising suppressor T cells. „Immunol Today”. 13 (4), s. 131–136, kwiecień 1992. DOI: 10.1016/0167-5699(92)90110-S. PMID: 1533765. 
    12. Y. Chen, V.K. Kuchroo, J. Inobe, D.A. Hafler i inni. Regulatory T cell clones induced by oral tolerance: suppression of autoimmune encephalomyelitis. „Science”. 265 (5176), s. 1237–1240, sierpień 1994. PMID: 7520605. 
    13. H. Groux, A. O’Garra, M. Bigler, M. Rouleau i inni. A CD4+ T-cell subset inhibits antigen-specific T-cell responses and prevents colitis. „Nature”. 389 (6652), s. 737–742, październik 1997. DOI: 10.1038/39614. PMID: 9338786. 
    14. P. Pereira, E.L. Larsson-Sciard, A. Coutinho, A. Bandeira. Suppressor versus cytolytic CD8+ T lymphocytes: where are the artefacts?. „Scand J Immunol”. 27 (6), s. 625–628, czerwiec 1988. PMID: 2969138. 
    15. T.T. MacDonald. Suppressor T cells, rebranded as regulatory T cells, emerge from the wilderness bearing surface markers. „Gut”. 51 (3), s. 311–312, wrzesień 2002. PMID: 12171947. 
    16. S. Sakaguchi, K. Fukuma, K. Kuribayashi, T. Masuda. Organ-specific autoimmune diseases induced in mice by elimination of T cell subset. I. Evidence for the active participation of T cells in natural self-tolerance; deficit of a T cell subset as a possible cause of autoimmune disease. „J Exp Med”. 161 (1), s. 72–87, styczeń 1985. PMID: 3871469. 
    17. F. Powrie, D. Mason. OX-22high CD4+ T cells induce wasting disease with multiple organ pathology: prevention by the OX-22low subset. „J Exp Med”. 172 (6), s. 1701–1708, grudzień 1990. PMID: 2258700. 
    18. F. Powrie, M.W. Leach, S. Mauze, L.B. Caddle i inni. Phenotypically distinct subsets of CD4+ T cells induce or protect from chronic intestinal inflammation in C. B-17 scid mice. „Int Immunol”. 5 (11), s. 1461–1471, listopad 1993. PMID: 7903159. 
    19. S. Sakaguchi, N. Sakaguchi, M. Asano, M. Itoh i inni. Immunologic self-tolerance maintained by activated T cells expressing IL-2 receptor alpha-chains (CD25). Breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various autoimmune diseases. „J Immunol”. 155 (3), s. 1151–1164, sierpień 1995. PMID: 7636184. 
    20. H. Schorle, T. Holtschke, T. Hünig, A. Schimpl i inni. Development and function of T cells in mice rendered interleukin-2 deficient by gene targeting. „Nature”. 352 (6336), s. 621–624, sierpień 1991. DOI: 10.1038/352621a0. PMID: 1830926. 
    21. D.M. Willerford, J. Chen, J.A. Ferry, L. Davidson i inni. Interleukin-2 receptor alpha chain regulates the size and content of the peripheral lymphoid compartment. „Immunity”. 3 (4), s. 521–530, październik 1995. PMID: 7584142. 
    22. T.M. Johanns, J.M. Ertelt, J.H. Rowe, S.S. Way. Regulatory T cell suppressive potency dictates the balance between bacterial proliferation and clearance during persistent Salmonella infection. „PLoS Pathog”. 6 (8), s. e1001043, 2010. DOI: 10.1371/journal.ppat.1001043. PMID: 20714351. 
    23. E.M. Shevach. The resurrection of T cell-mediated suppression. „J Immunol”. 186 (7), s. 3805–3807, kwiecień 2011. DOI: 10.4049/jimmunol.1100364. PMID: 21422250. 
    24. R.S. Wildin, F. Ramsdell, J. Peake, F. Faravelli i inni. X-linked neonatal diabetes mellitus, enteropathy and endocrinopathy syndrome is the human equivalent of mouse scurfy. „Nat Genet”. 27 (1), s. 18–20, styczeń 2001. DOI: 10.1038/83707. PMID: 11137992. 
    25. J.D. Fontenot, M.A. Gavin, A.Y. Rudensky. Foxp3 programs the development and function of CD4+CD25+ regulatory T cells. „Nat Immunol”. 4 (4), s. 330–336, kwiecień 2003. DOI: 10.1038/ni904. PMID: 12612578. 
    26. Y. Kiniwa, Y. Miyahara, H.Y. Wang, W. Peng i inni. CD8+ Foxp3+ regulatory T cells mediate immunosuppression in prostate cancer. „Clin Cancer Res”. 13 (23), s. 6947–6958, grudzień 2007. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-07-0842. PMID: 18056169. 
    27. Z. Liu, S. Tugulea, R. Cortesini, N. Suciu-Foca. Specific suppression of T helper alloreactivity by allo-MHC class I-restricted CD8+CD28- T cells. „Int Immunol”. 10 (6), s. 775–783, czerwiec 1998. PMID: 9678758. 
    28. M. Itoh, T. Takahashi, N. Sakaguchi, Y. Kuniyasu i inni. Thymus and autoimmunity: production of CD25+CD4+ naturally anergic and suppressive T cells as a key function of the thymus in maintaining immunologic self-tolerance. „J Immunol”. 162 (9), s. 5317–5326, maj 1999. PMID: 10228007. 
    29. W.F. Ng, P.J. Duggan, F. Ponchel, G. Matarese i inni. Human CD4(+)CD25(+) cells: a naturally occurring population of regulatory T cells. „Blood”. 98 (9), s. 2736–2744, listopad 2001. PMID: 11675346. 
    30. A.K. Abbas, C. Benoist, J.A. Bluestone, D.J. Campbell i inni. Regulatory T cells: recommendations to simplify the nomenclature. „Nat Immunol”. 14 (4), s. 307–308, kwiecień 2013. DOI: 10.1038/ni.2554. PMID: 23507634. 
    31. T.M. McCaughtry, K.A. Hogquist. Central tolerance: what have we learned from mice?. „Semin Immunopathol”. 30 (4), s. 399–409, grudzień 2008. DOI: 10.1007/s00281-008-0137-0. PMID: 19015857. 
    32. A. Coutinho, I. Caramalho, E. Seixas, J. Demengeot. Thymic commitment of regulatory T cells is a pathway of TCR-dependent selection that isolates repertoires undergoing positive or negative selection. „Curr Top Microbiol Immunol”. 293, s. 43–71, 2005. PMID: 15981475. 
    33. J.L. Bautista, C.W. Lio, S.K. Lathrop, K. Forbush i inni. Intraclonal competition limits the fate determination of regulatory T cells in the thymus. „Nat Immunol”. 10 (6), s. 610–617, czerwiec 2009. DOI: 10.1038/ni.1739. PMID: 19430476. 
    34. L.M. Relland, M.K. Mishra, D. Haribhai, B. Edwards i inni. Affinity-based selection of regulatory T cells occurs independent of agonist-mediated induction of Foxp3 expression. „J Immunol”. 182 (3), s. 1341–1350, luty 2009. PMID: 19155480. 
    35. H.M. Lee, C.S. Hsieh. Rare development of Foxp3+ thymocytes in the CD4+CD8+ subset. „J Immunol”. 183 (4), s. 2261–2266, sierpień 2009. DOI: 10.4049/jimmunol.0901304. PMID: 19620303. 
    36. B. Seddon, D. Mason. Regulatory T cells in the control of autoimmunity: the essential role of transforming growth factor beta and interleukin 4 in the prevention of autoimmune thyroiditis in rats by peripheral CD4(+)CD45RC- cells and CD4(+)CD8(-) thymocytes. „J Exp Med”. 189 (2), s. 279–288, styczeń 1999. PMID: 9892610. 
    37. S. Krämer, A. Schimpl, T. Hünig. Immunopathology of interleukin (IL) 2-deficient mice: thymus dependence and suppression by thymus-dependent cells with an intact IL-2 gene. „J Exp Med”. 182 (6), s. 1769–1776, grudzień 1995. PMID: 7500021. 
    38. G.C. Furtado, M.A. Curotto de Lafaille, N. Kutchukhidze, J.J. Lafaille. Interleukin 2 signaling is required for CD4(+) regulatory T cell function. „J Exp Med”. 196 (6), s. 851–857, wrzesień 2002. PMID: 12235217. 
    39. J.D. Fontenot, J.P. Rasmussen, M.A. Gavin, A.Y. Rudensky. A function for interleukin 2 in Foxp3-expressing regulatory T cells. „Nat Immunol”. 6 (11), s. 1142–1151, listopad 2005. DOI: 10.1038/ni1263. PMID: 16227984. 
    40. X. Tai, M. Cowan, L. Feigenbaum, A. Singer. CD28 costimulation of developing thymocytes induces Foxp3 expression and regulatory T cell differentiation independently of interleukin 2. „Nat Immunol”. 6 (2), s. 152–162, luty 2005. DOI: 10.1038/ni1160. PMID: 15640801. 
    41. F. Granucci, C. Vizzardelli, N. Pavelka, S. Feau i inni. Inducible IL-2 production by dendritic cells revealed by global gene expression analysis. „Nat Immunol”. 2 (9), s. 882–888, wrzesień 2001. DOI: 10.1038/ni0901-882. PMID: 11526406. 
    42. W. Ouyang, O. Beckett, Q. Ma, M.O. Li. Transforming growth factor-beta signaling curbs thymic negative selection promoting regulatory T cell development. „Immunity”. 32 (5), s. 642–653, maj 2010. DOI: 10.1016/j.immuni.2010.04.012. PMID: 20471291. 
    43. J.C. Marie, J.J. Letterio, M. Gavin, A.Y. Rudensky. TGF-beta1 maintains suppressor function and Foxp3 expression in CD4+CD25+ regulatory T cells. „J Exp Med”. 201 (7), s. 1061–1067, kwiecień 2005. DOI: 10.1084/jem.20042276. PMID: 15809351. 
    44. B. Salomon, D.J. Lenschow, L. Rhee, N. Ashourian i inni. B7/CD28 costimulation is essential for the homeostasis of the CD4+CD25+ immunoregulatory T cells that control autoimmune diabetes. „Immunity”. 12 (4), s. 431–440, kwiecień 2000. PMID: 10795741. 
    45. M. Hinterberger, G. Wirnsberger, L. Klein. B7/CD28 in central tolerance: costimulation promotes maturation of regulatory T cell precursors and prevents their clonal deletion. „Front Immunol”. 2, s. 30, 2011. DOI: 10.3389/fimmu.2011.00030. PMID: 22566820. 
    46. P.J. Spence, E.A. Green. Foxp3+ regulatory T cells promiscuously accept thymic signals critical for their development. „Proc Natl Acad Sci U S A”. 105 (3), s. 973–978, styczeń 2008. DOI: 10.1073/pnas.0709071105. PMID: 18198277. 
    47. J.M. Coquet, J.C. Ribot, N. Bąbała, S. Middendorp i inni. Epithelial and dendritic cells in the thymic medulla promote CD4+Foxp3+ regulatory T cell development via the CD27-CD70 pathway. „J Exp Med”. 210 (4), s. 715–728, kwiecień 2013. DOI: 10.1084/jem.20112061. PMID: 23547099. 
    48. K. Aschenbrenner, L.M. D’Cruz, E.H. Vollmann, M. Hinterberger i inni. Selection of Foxp3+ regulatory T cells specific for self antigen expressed and presented by Aire+ medullary thymic epithelial cells. „Nat Immunol”. 8 (4), s. 351–358, kwiecień 2007. DOI: 10.1038/ni1444. PMID: 17322887. 
    49. A.I. Proietto, S. van Dommelen, P. Zhou, A. Rizzitelli i inni. Dendritic cells in the thymus contribute to T-regulatory cell induction. „Proc Natl Acad Sci U S A”. 105 (50), s. 19869–19874, grudzień 2008. DOI: 10.1073/pnas.0810268105. PMID: 19073916. 
    50. A.I. Proietto, S. van Dommelen, L. Wu. The impact of circulating dendritic cells on the development and differentiation of thymocytes. „Immunol Cell Biol”. 87 (1), s. 39–45, styczeń 2009. DOI: 10.1038/icb.2008.86. PMID: 19048018. 
    51. I. Apostolou, H. von Boehmer. In vivo instruction of suppressor commitment in naive T cells. „J Exp Med”. 199 (10), s. 1401–1408, maj 2004. DOI: 10.1084/jem.20040249. PMID: 15148338. 
    52. D. Mucida, N. Kutchukhidze, A. Erazo, M. Russo i inni. Oral tolerance in the absence of naturally occurring Tregs. „J Clin Invest”. 115 (7), s. 1923–1933, lipiec 2005. DOI: 10.1172/JCI24487. PMID: 15937545. 
    53. S.K. Lathrop, N.A. Santacruz, D. Pham, J. Luo i inni. Antigen-specific peripheral shaping of the natural regulatory T cell population. „J Exp Med”. 205 (13), s. 3105–3117, grudzień 2008. DOI: 10.1084/jem.20081359. PMID: 19064700. 
    54. R.A. Gottschalk, E. Corse, J.P. Allison. TCR ligand density and affinity determine peripheral induction of Foxp3 in vivo. „J Exp Med”. 207 (8), s. 1701–1711, sierpień 2010. DOI: 10.1084/jem.20091999. PMID: 20660617. 
    55. S. Ikeda, S. Saijo, M.A. Murayama, K. Shimizu i inni. Excess IL-1 Signaling Enhances the Development of Th17 Cells by Downregulating TGF-β-Induced Foxp3 Expression. „J Immunol”. 192 (4), s. 1449–1458, luty 2014. DOI: 10.4049/jimmunol.1300387. PMID: 24431229. 
    56. E. Bettelli, Y. Carrier, W. Gao, T. Korn i inni. Reciprocal developmental pathways for the generation of pathogenic effector TH17 and regulatory T cells. „Nature”. 441 (7090), s. 235–238, maj 2006. DOI: 10.1038/nature04753. PMID: 16648838. 
    57. G. Monteleone, F. Pallone, T.T. MacDonald. Interleukin-21: a critical regulator of the balance between effector and regulatory T-cell responses. „Trends Immunol”. 29 (6), s. 290–294, czerwiec 2008. DOI: 10.1016/j.it.2008.02.008. PMID: 18440864. 
    58. T. Korn, E. Bettelli, W. Gao, A. Awasthi i inni. IL-21 initiates an alternative pathway to induce proinflammatory T(H)17 cells. „Nature”. 448 (7152), s. 484–487, lipiec 2007. DOI: 10.1038/nature05970. PMID: 17581588. 
    59. T.S. Davidson, R.J. DiPaolo, J. Andersson, E.M. Shevach. Cutting Edge: IL-2 is essential for TGF-beta-mediated induction of Foxp3+ T regulatory cells. „J Immunol”. 178 (7), s. 4022–4026, kwiecień 2007. PMID: 17371955. 
    60. L.M. D’Cruz, L. Klein. Development and function of agonist-induced CD25+Foxp3+ regulatory T cells in the absence of interleukin 2 signaling. „Nat Immunol”. 6 (11), s. 1152–1159, listopad 2005. DOI: 10.1038/ni1264. PMID: 16227983. 
    61. M.J. Benson, K. Pino-Lagos, M. Rosemblatt, R.J. Noelle. All-trans retinoic acid mediates enhanced T reg cell growth, differentiation, and gut homing in the face of high levels of co-stimulation. „J Exp Med”. 204 (8), s. 1765–1774, sierpień 2007. DOI: 10.1084/jem.20070719. PMID: 17620363. 
    62. C.M. Sun, J.A. Hall, R.B. Blank, N. Bouladoux i inni. Small intestine lamina propria dendritic cells promote de novo generation of Foxp3 T reg cells via retinoic acid. „J Exp Med”. 204 (8), s. 1775–1785, sierpień 2007. DOI: 10.1084/jem.20070602. PMID: 17620362. 
    63. J.M. Kim, A. Rudensky. The role of the transcription factor Foxp3 in the development of regulatory T cells. „Immunol Rev”. 212, s. 86–98, sierpień 2006. DOI: 10.1111/j.0105-2896.2006.00426.x. PMID: 16903908. 
    64. S.G. Zheng, J.H. Wang, W. Stohl, K.S. Kim i inni. TGF-beta requires CTLA-4 early after T cell activation to induce FoxP3 and generate adaptive CD4+CD25+ regulatory cells. „J Immunol”. 176 (6), s. 3321–3329, marzec 2006. PMID: 16517699. 
    65. V. Kronin, L. Wu, S. Gong, M.C. Nussenzweig i inni. DEC-205 as a marker of dendritic cells with regulatory effects on CD8 T cell responses. „Int Immunol”. 12 (5), s. 731–735, maj 2000. PMID: 10784619. 
    66. K. Kretschmer, T.S. Heng, H. von Boehmer. De novo production of antigen-specific suppressor cells in vivo. „Nat Protoc”. 1 (2), s. 653–661, 2006. PMID: 17802642. 
    67. H. Azukizawa, A. Döhler, N. Kanazawa, A. Nayak i inni. Steady state migratory RelB+ langerin+ dermal dendritic cells mediate peripheral induction of antigen-specific CD4+ CD25+ Foxp3+ regulatory T cells. „Eur J Immunol”. 41 (5), s. 1420–1434, maj 2011. DOI: 10.1002/eji.201040930. PMID: 21469094. 
    68. J.C. Ochando, C. Homma, Y. Yang, A. Hidalgo i inni. Alloantigen-presenting plasmacytoid dendritic cells mediate tolerance to vascularized grafts. „Nat Immunol”. 7 (6), s. 652–662, czerwiec 2006. DOI: 10.1038/ni1333. PMID: 16633346. 
    69. P. Soroosh, T.A. Doherty, W. Duan, A.K. Mehta i inni. Lung-resident tissue macrophages generate Foxp3+ regulatory T cells and promote airway tolerance. „J Exp Med”. 210 (4), s. 775–788, kwiecień 2013. DOI: 10.1084/jem.20121849. PMID: 23547101. 
    70. Y. Zheng, S. Josefowicz, A. Chaudhry, X.P. Peng i inni. Role of conserved non-coding DNA elements in the Foxp3 gene in regulatory T-cell fate. „Nature”. 463 (7282), s. 808–812, luty 2010. DOI: 10.1038/nature08750. PMID: 20072126. 
    71. N. Arpaia, C. Campbell, X. Fan, S. Dikiy i inni. Metabolites produced by commensal bacteria promote peripheral regulatory T-cell generation. „Nature”. 504 (7480), s. 451–455, grudzień 2013. DOI: 10.1038/nature12726. PMID: 24226773. 
    72. Y. Furusawa, Y. Obata, S. Fukuda, T.A. Endo i inni. Commensal microbe-derived butyrate induces the differentiation of colonic regulatory T cells. „Nature”. 504 (7480), s. 446–450, grudzień 2013. DOI: 10.1038/nature12721. PMID: 24226770. 
    73. D.K. Sojka, D.J. Fowell. Regulatory T cells inhibit acute IFN-γ synthesis without blocking T-helper cell type 1 (Th1) differentiation via a compartmentalized requirement for IL-10. „Proc Natl Acad Sci U S A”. 108 (45), s. 18336–18341, listopad 2011. DOI: 10.1073/pnas.1110566108. PMID: 22025707. 
    74. K.W. Moore, R. de Waal Malefyt, R.L. Coffman, A. O’Garra. Interleukin-10 and the interleukin-10 receptor. „Annu Rev Immunol”. 19, s. 683–765, 2001. DOI: 10.1146/annurev.immunol.19.1.683. PMID: 11244051. 
    75. Y.P. Rubtsov, J.P. Rasmussen, E.Y. Chi, J. Fontenot i inni. Regulatory T cell-derived interleukin-10 limits inflammation at environmental interfaces. „Immunity”. 28 (4), s. 546–558, kwiecień 2008. DOI: 10.1016/j.immuni.2008.02.017. PMID: 18387831. 
    76. C. Asseman, S. Mauze, M.W. Leach, R.L. Coffman i inni. An essential role for interleukin 10 in the function of regulatory T cells that inhibit intestinal inflammation. „J Exp Med”. 190 (7), s. 995–1004, październik 1999. PMID: 10510089. 
    77. M.G. Roncarolo, S. Gregori, M. Battaglia, R. Bacchetta i inni. Interleukin-10-secreting type 1 regulatory T cells in rodents and humans. „Immunol Rev”. 212, s. 28–50, sierpień 2006. DOI: 10.1111/j.0105-2896.2006.00420.x. PMID: 16903904. 
    78. M.O. Li, S. Sanjabi, R.A. Flavell. Transforming growth factor-beta controls development, homeostasis, and tolerance of T cells by regulatory T cell-dependent and -independent mechanisms. „Immunity”. 25 (3), s. 455–471, wrzesień 2006. DOI: 10.1016/j.immuni.2006.07.011. PMID: 16973386. 
    79. M.K. Levings, R. Sangregorio, C. Sartirana, A.L. Moschin i inni. Human CD25+CD4+ T suppressor cell clones produce transforming growth factor beta, but not interleukin 10, and are distinct from type 1 T regulatory cells. „J Exp Med”. 196 (10), s. 1335–1346, listopad 2002. PMID: 12438424. 
    80. C. Baecher-Allan, V. Viglietta, D.A. Hafler. Inhibition of human CD4(+)CD25(+high) regulatory T cell function. „J Immunol”. 169 (11), s. 6210–6217, grudzień 2002. PMID: 12444126. 
    81. N. Oberle, N. Eberhardt, C.S. Falk, P.H. Krammer i inni. Rapid suppression of cytokine transcription in human CD4+CD25 T cells by CD4+Foxp3+ regulatory T cells: independence of IL-2 consumption, TGF-beta, and various inhibitors of TCR signaling. „J Immunol”. 179 (6), s. 3578–3587, wrzesień 2007. PMID: 17785792. 
    82. K. Nakamura, A. Kitani, W. Strober. Cell contact-dependent immunosuppression by CD4(+)CD25(+) regulatory T cells is mediated by cell surface-bound transforming growth factor beta. „J Exp Med”. 194 (5), s. 629–644, wrzesień 2001. PMID: 11535631. 
    83. J. Andersson, D.Q. Tran, M. Pesu, T.S. Davidson i inni. CD4+ FoxP3+ regulatory T cells confer infectious tolerance in a TGF-beta-dependent manner. „J Exp Med”. 205 (9), s. 1975–1981, wrzesień 2008. DOI: 10.1084/jem.20080308. PMID: 18710931. 
    84. L.W. Collison, C.J. Workman, T.T. Kuo, K. Boyd i inni. The inhibitory cytokine IL-35 contributes to regulatory T-cell function. „Nature”. 450 (7169), s. 566–569, listopad 2007. DOI: 10.1038/nature06306. PMID: 18033300. 
    85. E. Bardel, F. Larousserie, P. Charlot-Rabiega, A. Coulomb-L’Herminé i inni. Human CD4+ CD25+ Foxp3+ regulatory T cells do not constitutively express IL-35. „J Immunol”. 181 (10), s. 6898–6905, listopad 2008. PMID: 18981109. 
    86. V. Chaturvedi, L.W. Collison, C.S. Guy, C.J. Workman i inni. Cutting edge: Human regulatory T cells require IL-35 to mediate suppression and infectious tolerance. „J Immunol”. 186 (12), s. 6661–6666, czerwiec 2011. DOI: 10.4049/jimmunol.1100315. PMID: 21576509. 
    87. L.W. Collison, V. Chaturvedi, A.L. Henderson, P.R. Giacomin i inni. IL-35-mediated induction of a potent regulatory T cell population. „Nat Immunol”. 11 (12), s. 1093–1101, grudzień 2010. DOI: 10.1038/ni.1952. PMID: 20953201. 
    88. A. Schmidt, N. Oberle, E.M. Weiss, D. Vobis i inni. Human regulatory T cells rapidly suppress T cell receptor-induced Ca(2+), NF-κB, and NFAT signaling in conventional T cells. „Sci Signal”. 4 (204), s. ra90, grudzień 2011. DOI: 10.1126/scisignal.2002179. PMID: 22375050. 
    89. D. Baatar, P.B. Olkhanud, V. Wells, F.E. Indig i inni. Tregs utilize beta-galactoside-binding protein to transiently inhibit PI3K/p21ras activity of human CD8+ T cells to block their TCR-mediated ERK activity and proliferation. „Brain Behav Immun”. 23 (7), s. 1028–1037, październik 2009. DOI: 10.1016/j.bbi.2009.06.003. PMID: 19520156. 
    90. D.C. Gondek, L.F. Lu, S.A. Quezada, S. Sakaguchi i inni. Cutting edge: contact-mediated suppression by CD4+CD25+ regulatory cells involves a granzyme B-dependent, perforin-independent mechanism. „J Immunol”. 174 (4), s. 1783–1786, luty 2005. PMID: 15699103. 
    91. W.J. Grossman, J.W. Verbsky, W. Barchet, M. Colonna i inni. Human T regulatory cells can use the perforin pathway to cause autologous target cell death. „Immunity”. 21 (4), s. 589–601, październik 2004. DOI: 10.1016/j.immuni.2004.09.002. PMID: 15485635. 
    92. G. Borsellino, M. Kleinewietfeld, D. Di Mitri, A. Sternjak i inni. Expression of ectonucleotidase CD39 by Foxp3+ Treg cells: hydrolysis of extracellular ATP and immune suppression. „Blood”. 110 (4), s. 1225–1232, sierpień 2007. DOI: 10.1182/blood-2006-12-064527. PMID: 17449799. 
    93. J.J. Kobie, P.R. Shah, L. Yang, J.A. Rebhahn i inni. T regulatory and primed uncommitted CD4 T cells express CD73, which suppresses effector CD4 T cells by converting 5'-adenosine monophosphate to adenosine. „J Immunol”. 177 (10), s. 6780–6786, listopad 2006. PMID: 17082591. 
    94. P.B. Ernst, J.C. Garrison, L.F. Thompson. Much ado about adenosine: adenosine synthesis and function in regulatory T cell biology. „J Immunol”. 185 (4), s. 1993–1998, sierpień 2010. DOI: 10.4049/jimmunol.1000108. PMID: 20686167. 
    95. P. Pandiyan, L. Zheng, S. Ishihara, J. Reed i inni. CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T cells induce cytokine deprivation-mediated apoptosis of effector CD4+ T cells. „Nat Immunol”. 8 (12), s. 1353–1362, grudzień 2007. DOI: 10.1038/ni1536. PMID: 17982458. 
    96. A.M. Thornton, E.M. Shevach. CD4+CD25+ immunoregulatory T cells suppress polyclonal T cell activation in vitro by inhibiting interleukin 2 production. „J Exp Med”. 188 (2), s. 287–296, lipiec 1998. PMID: 9670041. 
    97. G. Gasteiger, S. Hemmers, M.A. Firth, A. Le Floc’h i inni. IL-2-dependent tuning of NK cell sensitivity for target cells is controlled by regulatory T cells. „J Exp Med”. 210 (6), s. 1167–1178, czerwiec 2013. DOI: 10.1084/jem.20122462. PMID: 23650441. 
    98. J. Sitrin, A. Ring, K.C. Garcia, C. Benoist i inni. Regulatory T cells control NK cells in an insulitic lesion by depriving them of IL-2. „J Exp Med”. 210 (6), s. 1153–1165, czerwiec 2013. DOI: 10.1084/jem.20122248. PMID: 23650440. 
    99. M. de la Rosa, S. Rutz, H. Dorninger, A. Scheffold. Interleukin-2 is essential for CD4+CD25+ regulatory T cell function. „Eur J Immunol”. 34 (9), s. 2480–2488, wrzesień 2004. DOI: 10.1002/eji.200425274. PMID: 15307180. 
    100. D.Q. Tran, D.D. Glass, G. Uzel, D.A. Darnell i inni. Analysis of adhesion molecules, target cells, and role of IL-2 in human FOXP3+ regulatory T cell suppressor function. „J Immunol”. 182 (5), s. 2929–2938, marzec 2009. DOI: 10.4049/jimmunol.0803827. PMID: 19234188. 
    101. A.V. Villarino, C.M. Tato, J.S. Stumhofer, Z. Yao i inni. Helper T cell IL-2 production is limited by negative feedback and STAT-dependent cytokine signals. „J Exp Med”. 204 (1), s. 65–71, styczeń 2007. DOI: 10.1084/jem.20061198. PMID: 17227909. 
    102. T. Bopp, C. Becker, M. Klein, S. Klein-Hessling i inni. Cyclic adenosine monophosphate is a key component of regulatory T cell-mediated suppression. „J Exp Med”. 204 (6), s. 1303–1310, czerwiec 2007. DOI: 10.1084/jem.20062129. PMID: 17502663. 
    103. M. Fassbender, B. Gerlitzki, N. Ullrich, C. Lupp i inni. Cyclic adenosine monophosphate and IL-10 coordinately contribute to nTreg cell-mediated suppression of dendritic cell activation. „Cell Immunol”. 265 (2), s. 91–96, 2010. DOI: 10.1016/j.cellimm.2010.07.007. PMID: 20728078. 
    104. J. Bodor, J. Bodorova, R.E. Gress. Suppression of T cell function: a potential role for transcriptional repressor ICER. „J Leukoc Biol”. 67 (6), s. 774–779, czerwiec 2000. PMID: 10857848. 
    105. K. Wing, Y. Onishi, P. Prieto-Martin, T. Yamaguchi i inni. CTLA-4 control over Foxp3+ regulatory T cell function. „Science”. 322 (5899), s. 271–275, październik 2008. DOI: 10.1126/science.1160062. PMID: 18845758. 
    106. B. Liang, C. Workman, J. Lee, C. Chew i inni. Regulatory T cells inhibit dendritic cells by lymphocyte activation gene-3 engagement of MHC class II. „J Immunol”. 180 (9), s. 5916–5926, maj 2008. PMID: 18424711. 
    107. B.D. Solomon, C. Mueller, W.J. Chae, L.M. Alabanza i inni. Neuropilin-1 attenuates autoreactivity in experimental autoimmune encephalomyelitis. „Proc Natl Acad Sci U S A”. 108 (5), s. 2040–2045, luty 2011. DOI: 10.1073/pnas.1008721108. PMID: 21245328. 
    108. G.M. Delgoffe, S.R. Woo, M.E. Turnis, D.M. Gravano i inni. Stability and function of regulatory T cells is maintained by a neuropilin-1-semaphorin-4a axis. „Nature”. 501 (7466), s. 252–256, wrzesień 2013. DOI: 10.1038/nature12428. PMID: 23913274. 
    109. W. Hansen, M. Hutzler, S. Abel, C. Alter i inni. Neuropilin 1 deficiency on CD4+Foxp3+ regulatory T cells impairs mouse melanoma growth. „J Exp Med”. 209 (11), s. 2001–2016, październik 2012. DOI: 10.1084/jem.20111497. PMID: 23045606. 
    110. H.D. Ochs, E. Gambineri, T.R. Torgerson. IPEX, FOXP3 and regulatory T-cells: a model for autoimmunity. „Immunol Res”. 38 (1–3), s. 112–121, 2007. PMID: 17917016. 
    111. C.A. Lawson, A.K. Brown, V. Bejarano, S.H. Douglas i inni. Early rheumatoid arthritis is associated with a deficit in the CD4+CD25high regulatory T cell population in peripheral blood. „Rheumatology (Oxford)”. 45 (10), s. 1210–1217, październik 2006. DOI: 10.1093/rheumatology/kel089. PMID: 16571607. 
    112. M.E. Morgan, R.P. Sutmuller, H.J. Witteveen, L.M. van Duivenvoorde i inni. CD25+ cell depletion hastens the onset of severe disease in collagen-induced arthritis. „Arthritis Rheum”. 48 (5), s. 1452–1460, maj 2003. DOI: 10.1002/art.11063. PMID: 12746920. 
    113. E.Y. Lyssuk, A.V. Torgashina, S.K. Soloviev, E.L. Nassonov i inni. Reduced number and function of CD4+CD25highFoxP3+ regulatory T cells in patients with systemic lupus erythematosus. „Adv Exp Med Biol”. 601, s. 113–119, 2007. PMID: 17712998. 
    114. A.M. Cepika, I. Marinic, J. Morovic-Vergles, D. Soldo-Juresa i inni. Effect of steroids on the frequency of regulatory T cells and expression of FOXP3 in a patient with systemic lupus erythematosus: a two-year follow-up. „Lupus”. 16 (5), s. 374–377, 2007. DOI: 10.1177/0961203307077990. PMID: 17576742. 
    115. D. Wolf, K. Hochegger, A.M. Wolf, H.F. Rumpold i inni. CD4+CD25+ regulatory T cells inhibit experimental anti-glomerular basement membrane glomerulonephritis in mice. „J Am Soc Nephrol”. 16 (5), s. 1360–1370, maj 2005. DOI: 10.1681/ASN.2004100837. PMID: 15788479. 
    116. B. Zhang, X. Zhang, F. Tang, L. Zhu i inni. Reduction of forkhead box P3 levels in CD4+CD25high T cells in patients with new-onset systemic lupus erythematosus. „Clin Exp Immunol”. 153 (2), s. 182–187, sierpień 2008. DOI: 10.1111/j.1365-2249.2008.03686.x. PMID: 18505426. 
    117. X. Valencia, C. Yarboro, G. Illei, P.E. Lipsky. Deficient CD4+CD25high T regulatory cell function in patients with active systemic lupus erythematosus. „J Immunol”. 178 (4), s. 2579–2588, luty 2007. PMID: 17277168. 
    118. S. Lindley, C.M. Dayan, A. Bishop, B.O. Roep i inni. Defective suppressor function in CD4(+)CD25(+) T-cells from patients with type 1 diabetes. „Diabetes”. 54 (1), s. 92–99, styczeń 2005. PMID: 15616015. 
    119. V. Viglietta, C. Baecher-Allan, H.L. Weiner, D.A. Hafler. Loss of functional suppression by CD4+CD25+ regulatory T cells in patients with multiple sclerosis. „J Exp Med”. 199 (7), s. 971–979, kwiecień 2004. DOI: 10.1084/jem.20031579. PMID: 15067033. 
    120. J.M. Lund, L. Hsing, T.T. Pham, A.Y. Rudensky. Coordination of early protective immunity to viral infection by regulatory T cells. „Science”. 320 (5880), s. 1220–1224, maj 2008. DOI: 10.1126/science.1155209. PMID: 18436744. 
    121. M.C. Lanteri, K.M. O’Brien, W.E. Purtha, M.J. Cameron i inni. Tregs control the development of symptomatic West Nile virus infection in humans and mice. „J Clin Invest”. 119 (11), s. 3266–3277, listopad 2009. DOI: 10.1172/JCI39387. PMID: 19855131. 
    122. K. Lühn, C.P. Simmons, E. Moran, N.T. Dung i inni. Increased frequencies of CD4+ CD25(high) regulatory T cells in acute dengue infection. „J Exp Med”. 204 (5), s. 979–985, maj 2007. DOI: 10.1084/jem.20061381. PMID: 17452519. 
    123. G. Oldenhove, N. Bouladoux, E.A. Wohlfert, J.A. Hall i inni. Decrease of Foxp3+ Treg cell number and acquisition of effector cell phenotype during lethal infection. „Immunity”. 31 (5), s. 772–786, listopad 2009. DOI: 10.1016/j.immuni.2009.10.001. PMID: 19896394. 
    124. A. Haque, S.E. Best, F.H. Amante, S. Mustafah i inni. CD4+ natural regulatory T cells prevent experimental cerebral malaria via CTLA-4 when expanded in vivo. „PLoS Pathog”. 6 (12), s. e1001221, 2010. DOI: 10.1371/journal.ppat.1001221. PMID: 21170302. 
    125. P. Pandiyan, H.R. Conti, L. Zheng, A.C. Peterson i inni. CD4(+)CD25(+)Foxp3(+) regulatory T cells promote Th17 cells in vitro and enhance host resistance in mouse Candida albicans Th17 cell infection model. „Immunity”. 34 (3), s. 422–434, marzec 2011. DOI: 10.1016/j.immuni.2011.03.002. PMID: 21435589. 
    126. J.P. Scott-Browne, S. Shafiani, G. Tucker-Heard, K. Ishida-Tsubota i inni. Expansion and function of Foxp3-expressing T regulatory cells during tuberculosis. „J Exp Med”. 204 (9), s. 2159–2169, wrzesień 2007. DOI: 10.1084/jem.20062105. PMID: 17709423. 
    127. S. Shafiani, G. Tucker-Heard, A. Kariyone, K. Takatsu i inni. Pathogen-specific regulatory T cells delay the arrival of effector T cells in the lung during early tuberculosis. „J Exp Med”. 207 (7), s. 1409–1420, lipiec 2010. DOI: 10.1084/jem.20091885. PMID: 20547826. 
    128. H. Liu, M. Komai-Koma, D. Xu, F.Y. Liew. Toll-like receptor 2 signaling modulates the functions of CD4+ CD25+ regulatory T cells. „Proc Natl Acad Sci U S A”. 103 (18), s. 7048–7053, maj 2006. DOI: 10.1073/pnas.0601554103. PMID: 16632602. 
    129. I. Caramalho, T. Lopes-Carvalho, D. Ostler, S. Zelenay i inni. Regulatory T cells selectively express toll-like receptors and are activated by lipopolysaccharide. „J Exp Med”. 197 (4), s. 403–411, luty 2003. PMID: 12591899. 
    130. Q. Chen, T.S. Davidson, E.N. Huter, E.M. Shevach. Engagement of TLR2 does not reverse the suppressor function of mouse regulatory T cells, but promotes their survival. „J Immunol”. 183 (7), s. 4458–4466, październik 2009. DOI: 10.4049/jimmunol.0901465. PMID: 19748987. 
    131. Y. Belkaid, C.A. Piccirillo, S. Mendez, E.M. Shevach i inni. CD4+CD25+ regulatory T cells control Leishmania major persistence and immunity. „Nature”. 420 (6915), s. 502–507, grudzień 2002. DOI: 10.1038/nature01152. PMID: 12466842. 
    132. G. Monneret, F. Venet, A. Pachot, A. Lepape. Monitoring immune dysfunctions in the septic patient: a new skin for the old ceremony. „Mol Med”. 14 (1–2), s. 64–78, 2008. DOI: 10.2119/2007-00102.Monneret. PMID: 18026569. 
    133. G. Monneret, A.L. Debard, F. Venet, J. Bohe i inni. Marked elevation of human circulating CD4+CD25+ regulatory T cells in sepsis-induced immunoparalysis. „Crit Care Med”. 31 (7), s. 2068–2071, lipiec 2003. DOI: 10.1097/01.CCM.0000069345.78884.0F. PMID: 12847405. 
    134. F. Venet, C.S. Chung, H. Kherouf, A. Geeraert i inni. Increased circulating regulatory T cells (CD4(+)CD25 (+)CD127 (-)) contribute to lymphocyte anergy in septic shock patients. „Intensive Care Med”. 35 (4), s. 678–686, kwiecień 2009. DOI: 10.1007/s00134-008-1337-8. PMID: 18946659. 
    135. H. Huang, R. Xu, F. Lin, C. Bao i inni. High circulating CD39(+) regulatory T cells predict poor survival for sepsis patients. „Int J Infect Dis”. 30, s. 57–63, styczeń 2015. DOI: 10.1016/j.ijid.2014.11.006. PMID: 25461658. 
    136. P.O. Scumpia, M.J. Delano, K.M. Kelly-Scumpia, J.S. Weinstein i inni. Treatment with GITR agonistic antibody corrects adaptive immune dysfunction in sepsis. „Blood”. 110 (10), s. 3673–3681, listopad 2007. DOI: 10.1182/blood-2007-04-087171. PMID: 17690255. 
    137. H.W. Wang, W. Yang, L. Gao, J.R. Kang i inni. Adoptive transfer of bone marrow-derived dendritic cells decreases inhibitory and regulatory T cell differentiation and improves survival in murine polymicrobial sepsis. „Immunology”, listopad 2014. DOI: 10.1111/imm.12423. PMID: 25382110. 
    138. J.G. Heuer, T. Zhang, J. Zhao, C. Ding i inni. Adoptive transfer of in vitro-stimulated CD4+CD25+ regulatory T cells increases bacterial clearance and improves survival in polymicrobial sepsis. „J Immunol”. 174 (11), s. 7141–7146, czerwiec 2005. PMID: 15905557. 
    139. P.O. Scumpia, M.J. Delano, K.M. Kelly, K.A. O’Malley i inni. Increased natural CD4+CD25+ regulatory T cells and their suppressor activity do not contribute to mortality in murine polymicrobial sepsis. „J Immunol”. 177 (11), s. 7943–7949, grudzień 2006. PMID: 17114466. 
    140. J.B. Swann, M.J. Smyth. Immune surveillance of tumors. „J Clin Invest”. 117 (5), s. 1137–1146, maj 2007. DOI: 10.1172/JCI31405. PMID: 17476343. 
    141. C. Devaud, L.B. John, J.A. Westwood, P.K. Darcy i inni. Immune modulation of the tumor microenvironment for enhancing cancer immunotherapy. „Oncoimmunology”. 2 (8), s. e25961, sierpień 2013. DOI: 10.4161/onci.25961. PMID: 24083084. 
    142. M.J. Berendt, R.J. North. T-cell-mediated suppression of anti-tumor immunity. An explanation for progressive growth of an immunogenic tumor. „J Exp Med”. 151 (1), s. 69–80, styczeń 1980. PMID: 6444236. 
    143. S. Onizuka, I. Tawara, J. Shimizu, S. Sakaguchi i inni. Tumor rejection by in vivo administration of anti-CD25 (interleukin-2 receptor alpha) monoclonal antibody. „Cancer Res”. 59 (13), s. 3128–3133, lipiec 1999. PMID: 10397255. 
    144. J. Shimizu, S. Yamazaki, S. Sakaguchi. Induction of tumor immunity by removing CD25+CD4+ T cells: a common basis between tumor immunity and autoimmunity. „J Immunol”. 163 (10), s. 5211–5218, listopad 1999. PMID: 10553041. 
    145. E.Y. Woo, C.S. Chu, T.J. Goletz, K. Schlienger i inni. Regulatory CD4(+)CD25(+) T cells in tumors from patients with early-stage non-small cell lung cancer and late-stage ovarian cancer. „Cancer Res”. 61 (12), s. 4766–4772, czerwiec 2001. PMID: 11406550. 
    146. A.M. Wolf, D. Wolf, M. Steurer, G. Gastl i inni. Increase of regulatory T cells in the peripheral blood of cancer patients. „Clin Cancer Res”. 9 (2), s. 606–612, luty 2003. PMID: 12576425. 
    147. G. Darrasse-Jèze, A.S. Bergot, A. Durgeau, F. Billiard i inni. Tumor emergence is sensed by self-specific CD44hi memory Tregs that create a dominant tolerogenic environment for tumors in mice. „J Clin Invest”. 119 (9), s. 2648–2662, wrzesień 2009. DOI: 10.1172/JCI36628. PMID: 19652360. 
    148. R.J. deLeeuw, S.E. Kost, J.A. Kakal, B.H. Nelson. The prognostic value of FoxP3+ tumor-infiltrating lymphocytes in cancer: a critical review of the literature. „Clin Cancer Res”. 18 (11), s. 3022–3029, czerwiec 2012. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-11-3216. PMID: 22510350. 
    149. T. Nagato, H. Kobayashi, M. Yanai, K. Sato i inni. Functional analysis of birch pollen allergen Bet v 1-specific regulatory T cells. „J Immunol”. 178 (2), s. 1189–1198, styczeń 2007. PMID: 17202384. 
    150. M.R. Karlsson, J. Rugtveit, P. Brandtzaeg. Allergen-responsive CD4+CD25+ regulatory T cells in children who have outgrown cow’s milk allergy. „J Exp Med”. 199 (12), s. 1679–1688, czerwiec 2004. DOI: 10.1084/jem.20032121. PMID: 15197226. 
    151. G. Gri, S. Piconese, B. Frossi, V. Manfroi i inni. CD4+CD25+ regulatory T cells suppress mast cell degranulation and allergic responses through OX40-OX40L interaction. „Immunity”. 29 (5), s. 771–781, listopad 2008. DOI: 10.1016/j.immuni.2008.08.018. PMID: 18993084. 
    152. F. Meiler, S. Klunker, M. Zimmermann, C.A. Akdis i inni. Distinct regulation of IgE, IgG4 and IgA by T regulatory cells and toll-like receptors. „Allergy”. 63 (11), s. 1455–1463, listopad 2008. DOI: 10.1111/j.1398-9995.2008.01774.x. PMID: 18925882. 
    153. M. Akdis, J. Verhagen, A. Taylor, F. Karamloo i inni. Immune responses in healthy and allergic individuals are characterized by a fine balance between allergen-specific T regulatory 1 and T helper 2 cells. „J Exp Med”. 199 (11), s. 1567–1575, czerwiec 2004. DOI: 10.1084/jem.20032058. PMID: 15173208. 
    154. H. Yamashita, K. Takahashi, H. Tanaka, H. Nagai i inni. Overcoming food allergy through acquired tolerance conferred by transfer of Tregs in a murine model. „Allergy”. 67 (2), s. 201–209, luty 2012. DOI: 10.1111/j.1398-9995.2011.02742.x. PMID: 22050332. 
    155. Y. Pei, S. Geng, L. Liu, F. Yan i inni. Fel d 1-airway inflammation prevention and treatment by co-immunization vaccine via induction of CD4+CD25-Foxp3+ Treg cells. „Hum Vaccin Immunother”. 9 (5), s. 1019–1031, maj 2013. DOI: 10.4161/hv.23518. PMID: 23324570. 
    156. S. Ring, S.C. Schäfer, K. Mahnke, H.A. Lehr i inni. CD4+ CD25+ regulatory T cells suppress contact hypersensitivity reactions by blocking influx of effector T cells into inflamed tissue. „Eur J Immunol”. 36 (11), s. 2981–2992, listopad 2006. DOI: 10.1002/eji.200636207. PMID: 17048272. 
    157. G.B. Sletten, R. Halvorsen, E. Egaas, T.S. Halstensen. Memory T cell proliferation in cow’s milk allergy after CD25+ regulatory T cell removal suggests a role for casein-specific cellular immunity in IgE-mediated but not in non-IgE-mediated cow’s milk allergy. „Int Arch Allergy Immunol”. 142 (3), s. 190–198, 2007. DOI: 10.1159/000097021. PMID: 17106206. 
    158. W.G. Shreffler, N. Wanich, M. Moloney, A. Nowak-Wegrzyn i inni. Association of allergen-specific regulatory T cells with the onset of clinical tolerance to milk protein. „J Allergy Clin Immunol”. 123 (1), s. 43–52.e7, styczeń 2009. DOI: 10.1016/j.jaci.2008.09.051. PMID: 19130927. 
    159. M. Smith, M.R. Tourigny, P. Noakes, C.A. Thornton i inni. Children with egg allergy have evidence of reduced neonatal CD4(+)CD25(+)CD127(lo/-) regulatory T cell function. „J Allergy Clin Immunol”. 121 (6), s. 1460–1466, 1466.e1–7, czerwiec 2008. DOI: 10.1016/j.jaci.2008.03.025. PMID: 18455222. 
    160. S. Radulovic, M.R. Jacobson, S.R. Durham, K.T. Nouri-Aria. Grass pollen immunotherapy induces Foxp3-expressing CD4+ CD25+ cells in the nasal mucosa. „J Allergy Clin Immunol”. 121 (6), s. 1467–1472, 1472.e1, czerwiec 2008. DOI: 10.1016/j.jaci.2008.03.013. PMID: 18423565. 
    161. A. Kerstan, C. Albert, D. Klein, E.B. Bröcker i inni. Wasp venom immunotherapy induces activation and homing of CD4(+)CD25(+) forkhead box protein 3-positive regulatory T cells controlling T(H)1 responses. „J Allergy Clin Immunol”. 127 (2), s. 495–501.e1–6, luty 2011. DOI: 10.1016/j.jaci.2010.11.025. PMID: 21195472. 
    162. S. Qin, S.P. Cobbold, H. Pope, J. Elliott i inni. Infectious transplantation tolerance. „Science”. 259 (5097), s. 974–977, luty 1993. PMID: 8094901. 
    163. O. Joffre, T. Santolaria, D. Calise, T. Al Saati i inni. Prevention of acute and chronic allograft rejection with CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T lymphocytes. „Nat Med”. 14 (1), s. 88–92, styczeń 2008. DOI: 10.1038/nm1688. PMID: 18066074. 
    164. A.U. Engela, K. Boer, J.I. Roodnat, A.M. Peeters i inni. Genetic variants of FOXP3 influence graft survival in kidney transplant patients. „Hum Immunol”. 74 (6), s. 751–757, czerwiec 2013. DOI: 10.1016/j.humimm.2013.02.008. PMID: 23459079. 
    165. W.P. Min, D. Zhou, T.E. Ichim, G.H. Strejan i inni. Inhibitory feedback loop between tolerogenic dendritic cells and regulatory T cells in transplant tolerance. „J Immunol”. 170 (3), s. 1304–1312, luty 2003. PMID: 12538690. 
    166. X. Yu, C. Huang, B. Song, Y. Xiao i inni. CD4+CD25+ regulatory T cells-derived exosomes prolonged kidney allograft survival in a rat model. „Cell Immunol”. 285 (1–2). s. 62–68. DOI: 10.1016/j.cellimm.2013.06.010. PMID: 24095986. 
    167. S. Gregori, M. Casorati, S. Amuchastegui, S. Smiroldo i inni. Regulatory T cells induced by 1 alpha,25-dihydroxyvitamin D3 and mycophenolate mofetil treatment mediate transplantation tolerance. „J Immunol”. 167 (4), s. 1945–1953, sierpień 2001. PMID: 11489974. 
    168. A. Bushell, M. Karim, C.I. Kingsley, K.J. Wood. Pretransplant blood transfusion without additional immunotherapy generates CD25+CD4+ regulatory T cells: a potential explanation for the blood-transfusion effect. „Transplantation”. 76 (3), s. 449–455, sierpień 2003. DOI: 10.1097/01.TP.0000083043.84630.99. PMID: 12923427. 
    169. L. Graca, S.P. Cobbold, H. Waldmann. Identification of regulatory T cells in tolerated allografts. „J Exp Med”. 195 (12), s. 1641–1646, czerwiec 2002. PMID: 12070291. 
    170. I.E. Dijke, J.H. Velthuis, K. Caliskan, S.S. Korevaar i inni. Intragraft FOXP3 mRNA expression reflects antidonor immune reactivity in cardiac allograft patients. „Transplantation”. 83 (11), s. 1477–1484, czerwiec 2007. DOI: 10.1097/01.tp.0000264997.53153.8b. PMID: 17565321. 
    171. T. Muthukumar, D. Dadhania, R. Ding, C. Snopkowski i inni. Messenger RNA for FOXP3 in the urine of renal-allograft recipients. „N Engl J Med”. 353 (22), s. 2342–2351, grudzień 2005. DOI: 10.1056/NEJMoa051907. PMID: 16319383. 
    172. F. Meloni, P. Vitulo, A.M. Bianco, E. Paschetto i inni. Regulatory CD4+CD25+ T cells in the peripheral blood of lung transplant recipients: correlation with transplant outcome. „Transplantation”. 77 (5), s. 762–766, marzec 2004. PMID: 15021844. 
    173. D. San Segundo, G. Fernández-Fresnedo, E. Rodrigo, J.C. Ruiz i inni. High regulatory T-cell levels at 1 year posttransplantation predict long-term graft survival among kidney transplant recipients. „Transplant Proc”. 44 (9), s. 2538–2541, listopad 2012. DOI: 10.1016/j.transproceed.2012.09.083. PMID: 23146447. 
    174. A. Briem-Richter, A. Leuschner, F. Haag, E. Grabhorn i inni. Cytokine concentrations and regulatory T cells in living donor and deceased donor liver transplant recipients. „Pediatr Transplant”. 17 (2), s. 185–190, marzec 2013. DOI: 10.1111/petr.12044. PMID: 23331338. 
    175. J.L. Cohen, A. Trenado, D. Vasey, D. Klatzmann i inni. CD4(+)CD25(+) immunoregulatory T Cells: new therapeutics for graft-versus-host disease. „J Exp Med”. 196 (3), s. 401–406, sierpień 2002. PMID: 12163568. 
    176. A. Trenado, S. Fisson, E. Braunberger, D. Klatzmann i inni. Ex vivo selection of recipient-type alloantigen-specific CD4(+)CD25(+) immunoregulatory T cells for the control of graft-versus-host disease after allogeneic hematopoietic stem-cell transplantation. „Transplantation”. 77 (1 Suppl), s. S32–34, styczeń 2004. DOI: 10.1097/01.TP.0000106470.07410.CA. PMID: 14726768. 
    177. R.J. Robb, K.E. Lineburg, R.D. Kuns, Y.A. Wilson i inni. Identification and expansion of highly suppressive CD8(+)FoxP3(+) regulatory T cells after experimental allogeneic bone marrow transplantation. „Blood”. 119 (24), s. 5898–5908, czerwiec 2012. DOI: 10.1182/blood-2011-12-396119. PMID: 22538855. 

    Star of life.svg Przeczytaj ostrzeżenie dotyczące informacji medycznych i pokrewnych zamieszczonych w Wikipedii.

    Komórki NK (ang. Natural Killer – naturalni zabójcy) – główna grupa komórek układu odpornościowego odpowiedzialna za zjawisko naturalnej cytotoksyczności. Komórki NK zostały odkryte w latach 70. XX w. u osób zdrowych, wśród których nie spodziewano się odpowiedzi przeciwnowotworowej. Okazało się, że taka odpowiedź jednak występuje i jest silniejsza niż u osób chorych. Obok komórek NK za taki efekt odpowiadają hipotetyczne komórki NC. Ze względu na swoje właściwości komórki NK są zaliczane do komórek K. Efekt cytotoksyczny jest widoczny już po 4 godz. od kontaktu z antygenem i standardowo testuje się go na linii białaczkowej K562.Komórki tuczne (mastocyty) – komórki tkanki łącznej oraz błon śluzowych, mające okrągły lub owalny kształt, powstające z prekursorów szpikowych (prawdopodobnie tych samych, co bazofile), do miejsca ostatecznego osiedlenia docierają wraz z krwią. Najczęściej można spotkać je w okolicy niewielkich naczyń krwionośnych w narządach stykających się ze środowiskiem zewnętrznym. Jądro komórkowe jest niewielkie, chromatyna skondensowana, aparat Golgiego jest dobrze rozbudowany, pozostałe organella są słabo rozwinięte. W cytoplazmie znajdują się liczne, ciemne, zasadochłonne ziarna, mające właściwość metachromazji. Błona komórkowa tworzy liczne mikrokosmki. Ziarnistości mastocytów są bogate w histaminę i heparynę. Ponadto pobudzone wydzielają prostaglandyny i cytokiny (np. interleukinę 4 i TNF-α). Zawierają również proteazy (np. tryptazę lub chymazę). Na ich powierzchni znajduje się receptor FcεRI wiążący przeciwciała IgE. Mastocyty zostały odkryte i opisane po raz pierwszy przez Paula Ehrlicha w 1876 roku.


    Podstrony: [1] [2] [3] 4



    w oparciu o Wikipedię (licencja GFDL, CC-BY-SA 3.0, autorzy, historia, edycja)

    Warto wiedzieć że... beta

    Kinazy aktywowane mitogenami (kinazy MAP, MAPK, ang. mitogen-activated protein kinases, EC 2.7.11.24) – grupa kinaz białkowych serynowo-treoninowych, odgrywających rolę w regulacji odpowiedzi na sygnały zewnętrzne dochodzące do komórki (mitogeny). Mają one zatem wpływ na ekspresję genów, podziały, różnicowanie, ruch i apoptozę komórek.
    Salmonella – rodzaj bakterii z rodziny Enterobacteriaceae, grupujący Gram-ujemne względnie beztlenowe (fermentujące glukozę) pałeczki. Bakterie te są średniej wielkości, zwykle zaopatrzone w rzęski. Należą do bakterii względnie wewnątrzkomórkowych – rezydują w komórkach zarażonego organizmu.
    Choroba przeszczep przeciw gospodarzowi, GVHD (od ang. graft-versus-host disease) – niepożądana reakcja fizjologiczna zachodząca w organizmie biorcy przeszczepu pod wpływem wprowadzonych obcych antygenowo limfocytów.
    Transformujący czynnik wzrostu beta, TGF-β (od ang. transforming growth factor β) – białko składające się z trzech izoform: TGF-β1, TGF-β2, TGF-β3. Należy do większej rodziny białek zwanej nadrodziną transformującego czynnika wzrostu beta, która zawiera między innymi inhibinę, aktywinę, AMH, białka morfogenetyczne kości. TGF-β kontroluje proliferację oraz różnicowanie w większości typów komórek. Ma działanie przeciwzapalne.
    Komórki dendrytyczne (ang. dendritic cell, DC) są jedynymi, uznawanymi powszechnie za profesjonalne, komórkami prezentującymi antygen. Odgrywają one zatem podstawową rolę w pobudzaniu limfocytów, zwłaszcza dziewiczych. Nazwa komórki dendrytycznej pochodzi od charakterystycznego wyglądu, podobnego do komórki nerwowej, która posiada liczne, rozgałęziające się wypustki (dendryty).
    Grasica (łac. glandula thymus) to gruczoł znajdujący się w śródpiersiu przednim, tuż za mostkiem. Otoczony jest torebką łącznotkankową. Zbudowany jest z kory podzielonej na zraziki przegrodami łącznotkankowymi i z rdzenia wspólnego dla wszystkich zrazików kory. Zrąb tego narządu stanowią, w przeciwieństwie do innych narządów limfatycznych, komórki nabłonkowe pochodzenia endodermalnego. Charakterystycznymi cechami grasicy są: zjawisko inwolucji, czyli gromadzenia się w narządzie tkanki tłuszczowej żółtej, oraz występowanie w części rdzennej tzw. ciałek Hassala. Grasica produkuje hormony takie jak: tymozyna, THF, tymulina, tymostymulina.
    Witamina A – zbiorcza nazwa organicznych związków chemicznych z grupy retinoidów (z których najważniejszy jest retinol), pełniących w organizmie funkcję niezbędnego składnika pokarmowego, rozpuszczalnej w tłuszczach witaminy.

    Reklama

    Czas generowania strony: 0.383 sek.